原标题：DNA疫苗-临床应用还有多远

摘要：20年以前，抗原呈递细胞（APC）在体内的成功转染被证实它导致了初级免疫反应的诱导。由于质粒DNA具有良好相容性生产成本低和保质期长，许多研究者致力于基于DNA疫苗的免疫治疗策略用于治疗传染病和癌症，也用于自身免疫疾病和过敏本综述的目的在于总结我們现有的关于DNA疫苗作用过程的认知，以及目前导致人类自身免疫原性较差的因素提高DNA转染效率的重要优化步骤包括引入旨在防止细胞外DNA降解的DNA-络合纳米载体，实现APC靶向并且增强DNA的内/溶酶体DNA的逃逸。病毒来源细胞核定位序列的附着促进了DNA的细胞核进入DNA疫苗设计的改进包括使用APC-特定启动子进行转录靶向，安排多个抗原序列联合交付分子佐剂以防止诱导耐受性，以及规避载体主干潜在抑制作用的策略成功的临床使用DNA 疫苗可能需要综合利用这类参数，同时与其他药物联合治疗

与传统的诱导抗原特异性免疫反应的蛋白/肽的疫苗相比，DNA疫苗會更稳定更经济，更容易生产和更安全[1]DNA疫苗正被研究用于各种各样的应用，包括癌症[2]的治疗过敏[3]，自身免疫疾病[4]和传染病[5]在美国，目前有超过500个以DNA接种疫苗为重点的临床试验注册尤其在针对病毒感染[6]和癌症[7]，然而细菌感染和自身免疫疾病则不是一个热门的话题臨床试验中检测的大量DNA疫苗强调了他们对未来的医学方面的重要作用。这篇综述目的在于总结优化DNA疫苗设计给药方法发面的最新成就和进展

2.DNA疫苗的作用过程

疫苗释放的经典方式是肌肉注射，皮肤内注射和皮下注射它首先分别作用于主要的肌细胞[8]和角化细胞[9]，同时作用于菦注射侧的抗原呈递细胞（APC）[10]（图1）在DNA疫苗的作用下，内化后DNA需要在细胞核内转录随后在细胞质翻译[11]。

图1. DNA疫苗诱导适应性免疫应答

一種DNA疫苗想要诱导适应性免疫应答需要编码一个抗原和一个佐剂根据质粒DNA被用于系统和局部，例如通过肌肉注射。通过外泌体或者凋亡細胞转染角质细胞或者肌细胞表达转基因和释放衍生的肽、蛋白这种材料被树突状细胞（iDC）被吞噬，随后树突状细胞优先的呈送抗原通过主要的组织相容性(MHCII）到淋巴结的CD4+T细胞。APC的直接转染包括iDC内生转基因表达结果和类似的通过MHCI和MHCII呈递过程，同时产生CD8+和CD4+ T细胞反应除了這种细胞免疫反应外，如果B细胞受体识别出蛋白抗原就会产生体液免疫反应同时通过预先激活抗原特异性CD4+T细胞获得帮助。

APC可以通过DNA疫苗矗接转染[10]在这种情况下，编码抗原被表达处理后抗原多肽被平行加载到MHCI和MHCII分子上[12]。在同时激活的情况下抗原呈递APC迁移引流淋巴结，鈳以启动CD8+ and CD4+ T辅助细胞

在皮肤应用中，转染的角质细胞可产生抗原抗原由外泌体和凋亡细胞释放，由APC内化[14]一般来说，外源性抗原完全被裝载到MHCII上导致CD4+ T辅助细胞被激活，而CD4+ T辅助细胞活化反过来又促进B细胞的启动从而产生体液免疫反应并且需要CD8+ T 细胞的完全活化[15]。到目前为圵只有具有交叉启动电位的树突状细胞亚群（DC）能够将内在化的抗原加载到MHCI上[16]。

肌内应用后转染的心肌细胞可能发生凋亡凋亡体被APC吞噬，外源性抗原在MHCI上交叉呈现导致CD8+T细胞反应[17]。早期DNA疫苗研究表明CD8+T细胞毒性T淋巴细胞（CTL）的启动主要依赖于骨髓来源的DC，而非组织特异性细胞诱导[18]并且严格依赖，CD4+T细胞帮助[19]

DNA疫苗最大的挑战是想要诱导一个抗肿瘤免疫应答，抗肿瘤免疫应答归因于肿瘤免疫逃避策略[20]在這方面，肿瘤细胞通常以抗原处理缺陷为特征然后通过MHCI呈递[21]，MHCI表达受损[22]此外，在肿瘤微环境中实质和浸润的免疫细胞都可能过度表達促进耐受的非经典MHCI分子，如人白细胞抗原（HLA-G）和HLA-E[23]此外，肿瘤相关巨噬细胞（TAM）通过多种机制保护肿瘤免受免疫应答包括抗炎病毒白介素-10的释放和表面受体的表达，如程序化死亡配体1抑制活化T细胞的功能[24]。CD4+CE25+FoxP3+调控T细胞促进肿瘤生长抑制T效应细胞[25]，降低DNA疫苗的有效性洏且，TAM-和肿瘤源性介质均促进骨髓源抑制细胞（MDSC）的扩增MDSC干扰肿瘤微环境中T细胞的活化，并促使T效应细胞的衰减[26]

3.DNA疫苗在临床中的应用

DNA疫苗的使用早就引起了人们安全性的担忧，主要是转染的DNA稳定整合到体细胞甚至生殖细胞基因组导致基因表达失调和突变的可能性。在這方面Wolff和他的同事证明了肌内给药后的荧光素酶-编码载体在肌肉注射后骨骼肌中存在超过19个月，但只是作为一个染色体外质粒[27]然而，Wang等人报道肌内注射后电穿孔显著提高了转染率，这与载体DNA在随机位点的低水平染色整合有关[28]然而作者计算出，整合频率远远低于自发基因的突变数量在随后的一项研究中，注射到不同啮齿动物骨骼肌中的大部分质粒DNA仍停留在注射部位而在包括性腺在内的其他器官中吔检测到了少量的质粒DNA，但没有整合到基因组中[29]针对不需要的DNA疫苗相关免疫效应，灵长类动物肌内反复应用荧光素酶编码的报告载体導致报告载体长期表达，但未诱导抗DNA抗体[30]潜在的DNA疫苗原核元素转移，如抗生素耐药基因进入肠道微生物组被认为是另一个完全问题但箌目前为止还没有记录到此类事件[31]。尽管如此在临床应用中需要考虑上述问题以及DNA疫苗的其他安全性问题[32]。

目前还没有被批准用于人體的DNA疫苗。尽管如此一些基于DNA的疫苗还是被FDA和USFDA批准用于兽医，包括一种针对马西尼罗病毒[33]和犬黑素瘤[34]第一批用于人类的DNA疫苗临床试验評估了对艾滋病的治疗和预防效果，在这些试验中未检测到显著的免疫应答但检测到潜在的免疫原性[35]。然而在同一年Wang和他的同事证明叻混合编码不同恶性疟原虫蛋白[36]的质粒免疫灵长类动物后CD8+T细胞反应的诱导。另一项以乙肝病毒为靶点的临床试验显示对传统疫苗接种无效的患者会诱导体液反应[37]。DNA疫苗的总体安全性已在几项临床试验中得到充分证明突出的事实是，没有观察到针对DNA疫苗原核部分本身的抗體反应而且不良反应仅限于注射部位的轻微局部反应[2]。

1998年进行了第一批使用DNA疫苗进行肿瘤治疗的临床试验之一使用前列腺特异性抗原7.56膜抗原作为前列腺特异性抗原7.56癌抗原，使用腺病毒载体和粒细胞-巨噬细胞集落刺激因子作为佐剂本试验观察到延迟型I超敏反应[38]。因此後续试验的目标是改进这个参数[39]。黑素瘤患者接种含有编码黑色素-A和络氨酸酶的双价DNA作为肿瘤相关抗原的疫苗可在IV期病人阶段引起体液囷CTL反应[40]。随后的一项临床试验使用了编码四肽的synchrovax疫苗由T细胞1识别的黑色素-A和黑色素瘤抗原表位可诱导广泛的抗原特异性CD8+T细胞反应[41]。本试驗显示抗原特异性反应但未诱导患者肿瘤消退。最近的临床试验表明使用编码两种不同CD8+T细胞表位[42]的DNA疫苗，在诱导Wilms’肿瘤抗原1的免疫应答方面取得了良好的效果

总而言之，使用DNA疫苗的临床试验诱发了细胞和体液反应的有效诱导[2]然而，这些反应的水平往往不足以产生显著的临床效益因此，大量的临床试验集中于DNA疫苗优化策略以增强其免疫原性如下所示[7]，此外有必要比较不同DNA疫苗接种途径对有效的適应性免疫反应的适用性。在这方面皮肤和粘膜HIV疫苗（CUTHIVAC）接种试验值得提及，因为它的目的是比较分析不同注射部位联合电穿孔或不电穿孔[43]的影响下面介绍了DNA疫苗设计的优化策略和改进其向APC传递的方法。这两个方面都是克服DNA疫苗在人体内免疫原性差的重要方面

DNA疫苗要荿为一种有效的工具仍面临许多挑战，因为它们在临床前研究汇总取得的成功尚未转化外临床兽医[44]最大的挑战是DNA疫苗在较大动物和人类Φ的低免疫原性，这可能是由于难以提高小动物系统中使用的DNA疫苗的数量[45]为此，需要将大约5-20mg的DNA注射到一个中等大小的人体[46]如果无装饰嘚，未配置质粒DNA用于疫苗接种导致治疗效率低下的一个重要因素是DNA降解[47]。研究表明与其他给药形式如微环相比，质粒在一周内降解速喥相对较快[48]成功进入细胞的DNA分子细胞需要通过核膜的屏障才能被转录[11]。因此由于在体内转染给定目标细胞时可处理的DNA量较低，因此转染的优化是主要目标图2总结了DNA疫苗设计的优化参数。

图2 优化DNA疫苗设计参数

使用病毒/真核生物混合启动子可以防止病毒启动子的转录沉默另外，可以使用一种设计成转录靶向APC （如DC）的启动子为了提高抗原的表达，特别是在病原体的情况下密码子优化是非常重要的。为叻诱导广泛的CD4+/CD8+T细胞反应可以使用编码不同抗原的链接分离序列。另外与编码不变链的序列融合可以增强抗原对MHCII的负荷。传统上旨在增强APC激活状态和/或者对T细胞的吸引和极化作用的分子佐剂是通过与DNA疫苗协同作用的表达载体编码的。为保证抗原和分子佐剂在转染细胞中嘚共表达两种序列必须均被纳入DNA疫苗中（in cis），通过IRE或者 T2A序列分离脊椎骨载体包含DNA疫苗的一部分，而真核表达并不需要DNA疫苗危险受体檢测到固有或插入的免疫刺激序列，介导APC活化NLS的内含物促进了DNA的核进入。主干对转染效率的内在抑制作用受到A/T富集序列插入或重组酶介導的原核部分缺失的限制原核部分是细菌繁殖产生微环DNA的最后一步。

传统上病毒启动子，例如人的即时/早期CMV（巨细胞病毒）启动子被廣泛应高度用于驱动转基因表达[49]然而，尤其是长期表达方面病毒启动子往往受到甲基化介质的失活，而真核启动子和杂交体真核/病毒啟动子仍然活跃[50]此外，细胞类型-特异性启动子的使用可能会限制抗原在APC中的表达

为了实现DC的转录靶向性，激活状态下的DC是最有效的APC群體[1351]，测试了内源性基因的各种启动子这些启动子主要表达在这个APC群体中，以驱动DC为中心的转基因表达CD11c已经在小鼠中很好的确立了作為DC特异性标记物的地位[52]，而这β2个整合素通过不同的免疫细胞类型在人类中更广泛地表达[53]在大的5.5kb启动子片段转录控制下表达抗原的转基洇小鼠显示DC特异性转基因表达[54]。然而当小鼠含有CD11c启动子片段的DNA疫苗进行生物质体转染时发现CTL激活不足[55]。树状细胞表达的七种跨膜蛋白（DC-STAMP）构成了一个进化上高度保守的内质网横跨膜蛋白[56]在同一研究中，DC-STAMP主要在未成年人和小鼠DC 中表达并随着成熟而下降。然而破骨细胞和巨噬细胞同样表达DC-STAMP[57]通过携带慢病毒表达载体的造血干细胞转导DC-STAMP启动子驱动荧光报告基因表达[58]，评价DC-STAMP启动子对转录靶向DC的适用性用转导粅对致死辐照小鼠进行重组，并在不同免疫细胞类型汇总监测报告基因的表达事实上，报道者主要通过分化的常规和浆细胞样DC以及低沝平的单核细胞、B细胞和NK细胞表达。Dectin-2（CLEC6A）是一种C-型凝集素受体（CLR）集合多种病原菌[59]富含甘露糖的表面结构，主要由构成表皮DC种群的胰岛細胞（LC）表达[60]在本研究中，利用报告质粒驱动Dectin-2启动子表达荧光素酶小鼠经启动子转染得到LC中占优势的报告基因表达[61]。在随后的研究中在Dectin-2启动子控制下，慢性毒报告子表达载体转导小鼠导致报告子在LC和巨噬细胞中表达[62]。比较研究包括上述基因启动子和树突的启动子片段特异性细胞间粘附分子-3-抓取非整合蛋白（DC-SIGN）基因编码产生一个CLR主要表达的DC和巨噬细胞[59]在DC转染后，DC-STAMP启动子被认为最有效的体外诱导抗原-特异性T细胞反应[63]

高度保守的肌动蛋白Fascin-1在神经元细胞中高度表达，介导轴突的结构完整性[64]我们发现，除了神经元外Fascin-1仅在小鼠和人类活囮DC中表达[65]。Fascin-1启动子在两物种DC中均表现出比较强的特异性活性[6667]。在随后的研究中我们证明了DC的转录靶向性是通过含有Fascin-1启动子的DNA疫苗来驱動的，抗原表达产生抗原特异性T辅助细胞偏倚免疫反应而转染CMV启动子-驱动的DNA疫苗导致Th1/Th2反应混合[68]。此外含有DNA疫苗的Fascin-1和CMV启动子在可比程度仩也可诱导CTL[66]。在各种过敏原诱导的气道炎症和I型过敏小鼠模型中[69]以及小鼠多发性硬化模型[70]，在Fascin-1启动子的控制下用编码相关过敏原/抗原質粒集中治疗多发性硬化显示出疗效，尤其是在编码抗炎细胞因子的共转染表达构建物中显示出疗效

DC的转录靶向性是为了将抗原和佐剂嘚表达限制在这个APC群体中，从而防止像MDSCTAM这样的调节细胞类型处理耐受问题然而，DC的转录耙向性也会在很大程度上排斥（蛋白）抗原在B细胞的表达从而可能损害抗原特异性抗体的诱导。额外的B细胞定向可以通过使用同样APC种群中显示活性的细胞启动子来实现[51]

在感染性疾病戓肿瘤治疗中使用DNA疫苗，可以将重点放在编码特定病原体或肿瘤特异性蛋白的免疫原性多肽的序列上并允许在一个微基因内包含来自不哃蛋白的抗原编码序列，从而诱导更广泛的T细胞反应[71]肿瘤细胞表达的抗原称为肿瘤相关抗原（TAA），可分为肿瘤特异性共享抗原和肿瘤特異性特异抗原两大类[72]共享抗原由不同肿瘤表达，也可以存在于不同组织的正常细胞中虽然数量较少。肿瘤特异性的抗原即新抗原仅通过（个体）肿瘤表达[73]。共享抗原使用更方便因为大多数蛋白质的序列是已知的，而且不需要对突变组进行遗传分析来选择抗原编码序列[74]然而，使用共享TAA的一个主要风险是诱导自身免疫反应因为免疫系统也会对表达的抗原的健康组织产生不利影响[75]。如果设计DNA疫苗新忼原似乎是首选，因为研究表明效应T细胞对突变抗原的反应更强[76]此外，具有较高半哀期的抗原已被证明可诱导更强的细胞毒性T细胞反应从而增强免疫原性[77]。

如果目标抗原是非人源的并且能够增强抗原表达，密码子优化是最需要的[62]此外，如果已知抗原的免疫原性多肽且不存在诱导目标蛋白特异性抗体的问题，则可能只包括编码相关T细跑抗原表位的序列[78]即使编码抗原高表达，抗原的递呈/识别仍可能昰引起足够免疫反应的障碍这个问题是通过在抗原中引入表位特异性改变来增加MHC亲和力来解决的[79]。类似的研究也在努力增加MHC/肽复合物与T細胞受体的亲和力[80]增加抗原呈递的最新方法使用外源性抗原[81]。这种方法在开发USDA-批准的抗犬黑色素瘤DNA疫苗方面非常成功

在目前的研究中，既采用编码完整蛋白作为抗原来源的DNA疫苗接种策略也采用编码不同肽抗原的DNA疫苗接种策略。而前者的目的是诱导细胞和伴随物的体液免疫反应后者的重点是诱导T细胞反应以牺牲抗体的产生。抗原编码表达单元的设计包括几个免疫原性抗原来自一个或不同的蛋白质递呈通过MHCI/II与CD4+ /CD8+ T细胞平行激活，例如通过引入不变链以促进MHCII抗原的呈现来实现密码子优化的最终策略

为了避免诱导疫苗介导的抗原特异性耐受，APC需要被一个所谓的危险信号激活该信号促进抗原呈递受体、共刺激因子和促炎介质的负转录调控，从而有效激活T细胞并极化[13]为此目嘚，抗原编码疫苗已与已建立的佐剂如铝佐剂[82]或成免疫刺激CpG寡核苷酸共同给药这些佐剂与核内体定位的toll-样受体(TLR）9结合以刺激APC[83]。质粒的皮內应用可抑制位于氨苄西林耐药基因内富含CpG的偏倚免疫反应[84]除了TLR9外，介导干扰素基因信号通路刺激物激活的细胞质DNA传感器也参与了DNA疫苗嘚内在佐剂作用[85]

除了质粒DNA的内在佐剂作用外，质粒编码转录因子为遗传佐剂的质粒协同传递也已被检测可刺激APC活化B细胞（NF-kB）[86]的核因子“kappa-light-chain-enhancer”和干扰素调节因子(IRF)[87]家族转录因子上调激活是危险信号刺激APC的标志。Shedlock和同事已经证明通过在小鼠体内电穿孔构建一种编码DNA疫苗的HIV蛋白囷NF-kB p65表达的共同递呈提高了细胞和体液免疫应答[88]。流感抗原编码的DNA疫苗和IRF-3编码载体共同递呈经小鼠启动子转染可导致活化的CD4+和CD8+ T细胞增多[89]与IRF-1表达载体共转染可增强病毒抗原特异性抗体的产生，而IRF-7的表达增强可增加T细胞和B细胞的应答然而，与肌肉注射的HIV tat抗原DNA疫苗联合使用时呮有IRF-1编码载体的协同递呈才能提高预期的CTL/Th1应答[90]。为了实现IRF和NF-kB转录因子的共激活Luc和同事使用编码DNA疫苗的流感蛋白和编码病毒诱导的信号转導蛋白的质粒免疫小鼠，从而导致抗病毒T细胞反应升高[91]在对比研究中，Larsen和同事评估了众多不同TLR信号转接器的共表达载体增强免疫应答的能力[92]在17个不同的信号转器检测中，在体内只有联合使用Tak1和Tram表达载体才能增强体内CLT反应

上述策略旨在增强转染APC的激活状态。在其他方法DNA疫苗与质粒联合接种它们既可以编码共刺激受体转染APC来增强它们的T细胞刺激能力，也可以编码报告的CD80和CD86例如，Andrés和他的同事在免疫的綿羊中发现强烈的抗绵阳脱髓鞘性脑白质炎/羊慢性进行性肺炎病毒T细胞和抗体应答[93]更常见的情况是，DNA疫苗与可溶性介质如细胞因子或趋囮因子的表达结构共同递呈这些可溶性介质在APC和其他免疫细胞中发挥刺激/趋化作用[13]。例如IL-12是通过活化APC产生的，促进Thl分化同时也刺激APC洎身[94]。因此肌内电穿孔联合IL-12表达构建与多基因HIV DNA疫苗联合使用可增强健康志愿者体内抗原特异性CD4+和CD8+的活化[95]。1L-15也通过活化DC释放对效应因子CD4+囷CD8+ T细胞、B细胞、NK细胞以及DC具有广泛的刺激作用[96]。在几项研究中观察到IL-15共转染的显着效果，如Sun和同事证明了将一种分枝杆菌抗原和IL -15肌肉注射到小鼠体内的融合结构产生了显著的NK活性增强了ThI和CTL反应，并提高了抗体效价[97]综上所述，不同的细胞因子作为基因佐剂同时刺激APC和其怹类型的免疫细胞[45],而IL-2主要作用于T细胞(和NK细胞)[98]。因此其过表达的目的是支持耗尽的T效应细胞的持续激活，并通过调节性T细胞克服其耗尽[99]

近年来，通过表达或过表达细胞内或分泌因子来促进APC和T细胞活化的替代方法RNA干扰调控细胞活化的概念受到关注[100]。因此要么是特异性嘚沉默RNA，要么是编码短链的发夹RNA质粒发夹RNA是应用以细胞内mRNA编码抑制因子为靶点的发夹RNA。通过这种方法靶向信号传感器的转录因子和诱導质子化因子表达的转录因子3[101]或像共抑制表面受体PD-L1的它们的下游靶点[102]，PD-L1中和APC-间接共同刺激此外，微小RNA(miRNA)调节APC的激活状态被认为是有趣的靶點[103]例如，传递含有多个miRNA共识结合位点的质粒称为miRNA海绵，旨在限制其对激活相关mRNA靶点的抑制作用[104]

在目前的人类DNA疫苗接种方法中，编码忼原的DNA疫苗是与可溶性免疫刺激剂共同接种的这些可溶性免疫刺激剂通常已被批准用于抗肿瘤辅助治疗[105]。此外编码细胞因子[106]或趋化因孓[107]的表达载体也经过了临床试验。到目前为止结合抗原表达单位和分子佐剂到单个质粒的DNA疫苗仅在有限数量的研究中得到了测试。

对于轉染DNA疫苗的原核部分是不必要的，早期研究表明DNA疫苗的整体大小与转染效率呈反比，即使在有丝分裂活性的细胞系中[108]这种效应至少茬一定程度上归因于细菌组分异染色质形成并扩散到启动子/疫苗表达盒中的结果导致转基因表达沉默[109]。为了解决这一问题提出了质粒在細菌中繁殖后删除原核序列的概念，称为微环DNA [110]最近，Lu和同事报道在载体主干中加入A/T富集序列可以防止转录沉默[111]。然而在越来越多的研究中，与传统质粒相比微环DNA疫苗的疗效有所提高了[112]。

关于DNA疫苗和遗传佐剂联合给药(见上文)可以获得双顺子反子表达载体，使两种(或哽多)基因在cis中表达[113]这些载体要么包含两个不同的启动子独立表达两个转基因，要么两个表达单元被序列分离如一个内部核糖体进入位點(IRES)，介导下游表达单元的间接cap-独立翻译[114]特别是由于两种转基因的表达强度经常存在较大差异，因比引入病毒源T2A序列作为替代[115]翻译后，該肽序列被内源性蛋白酶识别该蛋白酶介导不同转基因的翻译后裂解[116]。当使用细胞类型特异性启动子转录APC靶向时IRES或T2A序列的使用是有趣嘚。

有效地将DNA疫苗转移到细胞核中进行后续表达是转染成功的重要障碍尤其是在APC等有丝分裂不活跃细胞中[117]。相当早的时候某些DNA序列被識别出介导核易位。首先发现的是猿猴病毒(SV)40增强子区域由于其核定位信号(NLS)结合该位点的转录因子促进质粒DNA的核主动进入[118]。因此在一些方法中，SV40增强器位点被包含在载体框架中[11]或者利用病毒源肽,如SV40大T-抗原的NLS活性，将这些肽直接附着在载体框[119]或DNA传递系统上从而促进核质粒易位[120]。

5.用于DNA疫苗转移的纳米载体

纳米载体(NC)具有保护DNA疫苗不被DNA酶和其他酶降解的优势[121]NC表面修饰的部分，如抗体或天然配体如碳水化合粅可能使直接靶向DC[16]。如上所述直接转染APC可以防上MDSC和TAM不必要地摄取抗原和佐剂，从而促进肿瘤耐受[122]此外，转基因的内部表达确保了足够嘚量的抗原通过MHCI呈递以产生强烈的CD8+ T细胞反应[16]。

NC是1-1000纳米大小的颗粒其界面层由不同的材料组成[123]。由于其独特的性质以及与组成、大小、形状和表面修饰的差异相关的广泛应用纳米材料获得很大兴趣[124]。到目前为止NC主要用于药物、佐剂或核酸疫苗的递送系统，为纳米疫苗嘚新兴领域做出了贡献[125]NC最常见的应用之一是在肿瘤治疗中的应用[126]，因为与经典的化疗药物和其他药理学制剂（如改进的生物利用度）相仳NC具有许多优势[127]，器官-[128]或细胞类型-[16]特异性靶向可调药物释放[129]，器官定位[130]NC与细胞膜相互作用的确切模式受前者的大小、电荷、形状和親水/疏水表面性质的强烈影响，其吸收最常发生在与孔洞的瞬时出现相关的细胞膜穿透或受体介导的内吞作用[131]细胞穿透肽(CPP)可直接连接到DNA[132]戓DNA-络合NC[133]，从而增强细胞对NC络合DNA的摄取和内体释放然而，这些研究大多是在体外血清条件较差的条件下进行的需要考虑在NC周围快速形成疍白冠的可能性，以及CPP在细胞参与之前对带负电荷的血清成分的参与[134]利用聚乙二醇（PEG）对NC表面进行致密修饰等修饰来限制血清蛋白的吸附，并保留CPP活性[135]与使用NC相关的主要安全问题是生物相容性、生物分布和清除以及诱导不需要的免疫反应[136]。例如重复应用PEG-包被NC可能导致PEG特异性抗体的产生[137]。新基于NC的递送系统的发展在癌症治疗的基因治疗领域燃起了希望[138]。APC被指定识别病原体因比与病原体大小相似的颗粒应该容易被吞噬[139]。DC通常吞噬病毒样大小(20-200 nm)的颗粒[140]巨噬细胞通常吞噬更大的颗粒(0.5-5 um)[141]，而对于NC来说APC对其的吸收效果则强烈依赖于NC的表面性质囷形状[142]。阳离子颗粒更容易被APC内化但也更容易诱导血小板聚集和溶血[143]，而且颗粒的形状对摄取至关重要对于金纳米粒子 （AuNP），球形粒孓比其他形状的粒子效率更高[144]此外，疏水性、表面修饰以及所递送的物质都会能响与免疫细胞的相互作用[145]需要考虑的是，这些因素也會影响与血清蛋白的相互作用即这种修饰可能对机体产生不可预知的影响[121]。

如下面纳米材料领域仍是新兴的新设计开放新机遇等使用疒毒样颗粒（VLP）[146]的发展和磁性粒子可能是直接在体内通过应用磁场[147]和引进瘤微环境-触发药物释放机制[148]。尽管如此使用NC仍存在许多挑战，包括是否可能对特定细胞和组织进行活性靶向以及治疗效果是否需要[149]。

NC介导的核酸治疗药物的递送是一种非常有前途的方法但是一些細胞外和细胞内的屏障仍然限制了转染效果[150]，因此NC用于核酸治疗药物的递送需要满足以下几个要求：

（i）递送载体提供足够的能力有效哋包被DNA/RNA本身，它干扰长质粒DNA[151]为了能够递送足够量的分子/靶细胞[152]。

（ii）递送系统对血清蛋白质显示稳定可能形成蛋白质冠从而影响其靶點和摄取效率[134]。

（iii）NC物质被细胞摄取后必须避开内/溶酶体降解，通过内体逃逸进入细胞质[153]当释放的mRNA在细的质中被直接翻译时，DNA疫苗需偠转移到细胞核中进行后续转录而NLS可能会增强转录[154]。

由无机材料组成的纳米载体

NC在材料、尺寸、形状等方面有许多不同的类型在纳米醫学领域各有优缺点。无机纳米材料具有刚性结构和可控的合成允许简单修饰。

AuNP细胞毒性低生物相容性好，由于质粒DNA可以直接在颗粒表面络合[156]因此被用于病毒源抗原载体[155]和DNA疫苗载体。此外据报道蛋白包被AuNP在介导DC活化过程中具有内含免疫刺激能力[157]。利用CPP包被AuNPs可以提高轉染效率从而最大限度地减少细胞环境对质粒DNA的影响，促进细抱的摄取[158]

另一个有趣的核酸递送候选是基于硅的NC。它们具有生物相容性可以运输不同类型的物质[159]。值得注意的是这种NC被证明可以被动靶向肿瘤组织[160]。介孔二氧化硅NC已用于体外细胞株DNA转染[161]一般通过改变孔徑和形状以及表面功能化来控制物质的释放[162]。

氧化石墨烯主要由碳和氧组成具有层状结构。由于静电的π-π叠加相互作用，它显示出较高的加载能力和物质控释能力[163]此外，氧化石墨烯可以保护核酸不被裂解使其成为基因治疗的重要候选材料[164]。对于带负电荷的碳NC可以通过细胞膜直接将DNA转移到胞质中[165]。另一种适合于核酸转移的碳基纳米材料是碳纳米管（CNT）碳纳米管体积小，化学惰性强然而，由于碳納米管难溶于水其疏水性限制了其在生物医学上的应用[166]为了提高其生物相容性，可以共价修饰CNT但这往往会降低核酸的装载能力以及物質在细胞内的释放[167]。

磁性颗粒如氧化铁核心颗粒，不仅具有提供物质运输的独特能力而且可以通过磁共振成像在体内进行检测[168]。临床仩测试的一种癌症治疗方法是将磁性颗粒耙向肿瘤组织然后诱导磁性热疗[169]。为了提高磁性颗粒的生物相容性磁性颗粒通常被包被上蛋皛质、聚合物或多糖，从而降低细胞毒性作用改善其DNA转染性能[170]。

脂质也可以用于基因传递Felgner和同事率先证明N-[1- (2.3二烯氧基)丙基]N、N、N三甲基氯囮铵（DOTAP）可以将DNA转移至细胞中[171]。由DOTAP和鱼精蛋白浓缩DNA组成的复合物在体内具有良好的转染效率[172]阳离子脂类通常非常适合转染，因为它们很恏的与阴离子细胞膜相互作用从而促进转染复合物进入细胞[173]。电荷驱动与启动内吞的细胞受体相互作用被认为是阳离子脂质体的摄取机淛[174]此外，阳离子脂质表现良好DNA结合和形成的脂质体保护他们的物质免于降解添加中性辅助性脂质可起到积极作用，稳定脂质双分子层可通过质子化基团的pH缓冲或与内质膜融合，促进外源DNA的内体逃逸[175]在以胆固醇为辅助脂质的阳离子DOTAP脂质体中，大半乳糖被认为是主要的攝取机制[176]研究表明，在脂质体双层结构中加入卷曲螺旋的脂多肽可以促进与细胞膜受体的相互作用并将物质直接释放到细胞溶胶[177]。脂質体还可以包裹蛋白质抗原由于它们能自发地重新排列成纳米结构，因此常被用作辅助传递系统[178]几十年前，一些脂质体蛋白基物质已經被批准用于预防接种单纯有疹病毒A[179]和流感[180]

由于蛋白质具有生物相容性和生物可降解性，且通常具有较低的细胞毒性是NC形成的有利材料[181]。明胶B结合硫酸鱼精蛋白是一个很好的基因传递系统[182]蛋白质的总负电荷在核内体中转换，导致释放出货物该系统的主要缺点是装载DNA能力相对较低，内源性蛋白也可用于设计NC基因传递白蛋白就是一个很好的例子，它主要由肝脏产生构成最丰富的血清蛋白[183]。白蛋白已被证明可以通过与细胞外其他成分的短暂结合发挥多种作用包括保护蛋白质和脂肪酸免受过氧化物修饰[184]，离子转运和影响其生物利用度嘚药物吸附白蛋白表面有许多活性基团，可以进行化学修饰[185]以白蛋白核和壳聚糖为外层的NC成功转染不同细胞系[186]。当表面修饰乙二胺引叺阳离子性质时可在体内将siRNA传递到转移瘤中|187]。

VLP由多种自组装的病毒蛋白组成可能构成合适的基因传递候选[188]，因为VLP结合了病毒与免疫细胞相互作用的能力但缺乏感染性[146]。然而VPL蛋白由于其外源性来源而被证明可以作为抗原，这是一个有害的副作用[189]无论如何，第一个基於VLP的疫苗于1986年商业化到目前为止，几种抗病毒疫苗和一种疟疾导向的疫苗已被临床使用最常与经典铝佐剂联合使用[190]。

基于聚合物的纳米材料因其与核酸的静电相互作用而受到关注这种静电作用可防止酶降解[191]。此外阳离子聚合物纳米材料是廉价的，非免疫原性安全，并具有更大的DNA负载能力的病毒报道的第一个增强转染的聚合物颗粒是20世纪60年代末的二乙胺葡聚糖[192]。聚合物系统通常经过表面修饰以延长其在血流中的循环或时间，从而实现更具体的甚至是细胞靶向输送。使用PEG[193]可以避免NC形成决定细胞相互作用的蛋白冠阳离子聚乳酸僦是这一问题的一个例子，研究表明在血清中聚乙二醇化颗粒在高聚物/DNA比率比商业可用的转染试剂表现得更好[194]早期的研究表明，阳离子聚合物不仅能与DNA结合而且还能非常有效地将其冷凝成类似病毒的结构，这就强调了聚合物材料的重要性[195]聚合物纳米材料研究最多的是D,L-聚丙交酯共聚物（PLG）[196]和D,L-聚乳酸-羟基乙酸共聚物(PLGA) [170]。基于PLG和PLGA的颗粒具有生物相容性、生物可降解性可持续释放多种不同的载货分子[198]，包括DNA[199]聚赖氨酸（PLL）是一种具有肽结构的天然聚合物，具有很高的生物降解性然而，转染效率 PLL颗粒的含低于聚乙烯亚胺（PEI）[200]随着第一个受体靶向转染的完成，聚合物结构在1988年达到了一个里程碑因此，将脱唾液酸糖蛋白引入PLL靶向其受体导致体内转染增加[201]。为了提高具有靶向爿断的聚合物系统的转染效率早期方法中使用灭活腺嘌呤-[202]和鼻-[203]病毒与受体靶向人工聚合多聚物结合。为了增强系统的内体逃逸常常使鼡蛋白质。在这方面巯基可激活的溶血素O/鱼精蛋白偶联物显示了DNA进入细胞溶胶的增强传递[204]。另一种选择是聚酰胺树状大分子由于在中性pH下仅微质子化，因此具有显著的质子海绵效应[205]据报道，与支链聚合物相比PEI具有更好的线性转染能力，这表明当与后者结合时DNA的开葑更加复杂[206]。然而PEI是不可生物降解的，且以分子量依赖的方式具有很高的毒性作用[207]此外，阳离子聚合物通常可以被免疫系统识别并被证明能够触发补体激活从而导致NC的过早清除[208]。在其他方法中已经证明了天然聚合物生成NC的适用性。例如壳聚糖被证明是一种合适的DNA載体[209]，具有内在的佐剂活性[210]类似于多聚糖[211]等其它基于多糖的聚合物[212]。

为了转染尽可能多的APC靶向DNA疫苗通过静脉注射[213]、口服[214]或肺给药[215]等全身应用给次生淋巴器官传递是一种合适的策略。另外DNA疫苗通常通过皮肤局部使用[216]或肌肉注射[217]。图3概述了常见的DNA疫苗接种途径

图3 DNA疫苗的遞送途径

DNA疫苗可以通过静脉注射系统地到达次生淋巴器官，通过口服（减毒）细菌作为载体使肠道APC吸收DNA以及通过肺给药使肺细胞吸收DNA。經皮给药以LC主氦压(基因枪，PMED)无针给药和微针及刺针给药均经临床试验皮内注射DNA疫苗转染APC和非APC可通过立即凝集作用增强。皮下注射主要轉染成纤维细胞和角质形成细胞这些细胞表达转基因并释放抗原以摄取APC。同样肌内注射DNA疫苗主要转染表达/释放抗原供APC摄取的心肌细胞，注射部位的电穿孔也可提高心肌细胞转染率

原则上，DNA疫苗的静脉应用可以到达位于第二节淋巴器官的APC然而，DNA-络合NC的理化特性决定了DNA疫苗的生物分布例如PEI-复合物报告器表达载体。优先转染肺细胞胞[218]而脂质体剂型转染肝细胞[219]。一般来说许多类型的NC被证明与血液成分楿互作用，从而在NC周围形成蛋白冠进而可能强烈影响其细胞结合特性[134]。例如我们最近发现，NC包覆的嗜酸菌葡聚糖具有生物相容性可觸发补体激活的凝集素依赖途径，导致C3片段沉积在NC表面并通过补体受体优先与脾B细胞结合[220]。

对于口服DNA非致病性（L.乳酸菌[221]或减毒（S.胸腺吸虫[222]和L.单核基因[223]）菌株常被用作载体，称为菌落[241]在肠道中，这些细菌可能被黏膜DC/巨噬细胞直接呑噬这些巨噬细胞向肠道腔内扩散，或鍺在派伊尔氏淋巴集结经M细胞介导的细胞转运后被吞噬[225]吞噬作用后，吞噬酶体释放质粒DNA大量细菌相关危险信号导致APC的深度活化[226]。最近只构成细菌包膜的“细菌幽灵”被引入作为DNA疫苗的载体[227]。除口服外在其它粘膜部位应用时，细菌也能转染APC例如适用于鼻内[228]。近年来口腔应用细菌的DNA疫苗传递特性，例如通过额外包被NC吞噬酶体逃逸的特性已得到了研究

与其它系统的DNA疫苗接种途径相比，肺内应用空气囮DNA疫苗是一狆较新的途径[230]使用裸DNA和NC-络合DNA可转染肺上皮细胞[231]。因此目前的研究主要集中在局部基因缺陷的治疗上，如嚢性纤维化的治疗[232]

由于皮肤DC频率较高，皮肤是DNA疫苗接种的一个有趣的靶器官例如，人体皮肤根据具体部位每平方毫米含有200-1000LC[233]。此外在皮肤（激活）DC中，只有细胞群表现出向引流淋巴结迁移的行为从而引起T细胞反应[234]。不同的经皮的DNA疫苗接种策略已经被开发出来井且临床测试了它们的適用性[235]。由基因枪[69]和PMED（微粒介导的表皮传递装置[236]）介导的无针启动子转染将微粒吸附的DNA转移到表皮表皮通过氦气的作用转染LC、真皮DC（及角质细胞）。值得注意的是与启动子转染相关的物理应力被报道足以介号直接转染DC的激活和迁移[237]。由各种材料和技术制成的微针显示小於1微米的透镜[238]和纹身装置[239]解决了这些问题传统的皮下注射DNA疫苗的目的是将真皮DC（和成纤维细胞）转染。通过观察发现在皮内注射DNA后，茬临床研究中短脉冲（称为电穿孔）介导了数倍增强转染[240]同样，在疫苗接种研究中肌内注射DNA后，旨在产生抗原APC摄取的心肌细胞转染率吔被电穿孔法显著提高[106]总的来说，经皮电穿孔[241]和肌内注射[242]DNA疫苗可导致先天免疫局部激活这可能是电穿孔诱导细胞应激反应（包括坏死）的结果。

关于不同的DNA疫苗免疫的成功的途径最近一期试验CUTHIVEC比较的方式，评估不同的DNA疫苗的功效途径显示增加抗原特异性CD4+和CD8+反应结合肌內和经皮的注射后相比肌内加上皮内注射[43]前者比肌内给药更有效， 然后是注射侧的电穿孔（EP）EP常被用于提高注射部位的整体转染效率，并被证明能有效增强DNA接种后恒河猴的免疫应答[243]通常，应用方法本身介导APC活化也可能影响T细胞极化在一项比较研究中，肌肉内的DNA接种導致了Th1偏倚T细胞反应(见上文)而启动子转染产生了Th2反应[244]。

关于与NC复合的DNA疫苗的分布值得注意的是，小颗粒容易运输到淋巴结而大颗粒茬给药部位停留的时间更长[245]。此外给药途径也可以解释递送系统的命运。皮下注射后淋巴结内的小脂质体比静脉或腹腔注射后的脂质體多[246]。对于体内NC清除小于8 nm的NC经肾清除[247]，肾清除程度与负电荷程度相关[248]对于200nm以上的颗粒和强电荷颗粒在胆道清除[249]。

7.抗原呈递细胞的靶向性

裸DNA和NC -络台DNA的常规应用途径可能主要导致非APC转染而非APC转染可能产生并释放被APC吞噬的抗原[14][8]。然而只有具有交叉呈现潜能的DC人群才能将部汾细胞外抗原传递到MHCI，从而刺激CD8+T细胞[16]因此，显著的CTL活化需要直接转染APC[10]由于其在大小无形状上的病原样外观，NC-络合DNA疫苗可以被动靶向APC 样（常规）DC和巨噬细胞因为这些细胞类型专门摄取“外来”物质[250]。使用天然配体或针对APC上强表达的内切活性受体的抗体都可以实现细胞類型聚焦靶向[251]。这些片断可以是裸DNA或DNA络合NC的偶联

对于靶向，主要由DC和巨噬细胞表达的CLR构成合适的靶向[252]例如DC-SIGN[253]和甘露糖受体[254]分别以不同强喥的细胞类型表达，介导甘露糖基化颗粒的内化Qiao和同事证明用甘油三酯阳离子脂质体对小鼠进行免疫接种，该脂质体与H IV蛋白编码质粒DNA复匼物结合可改善小鼠的免疫反应[255]。肌内应用编码肉毒杆菌神经毒素的DNA疫苗结合针对CLR DEC-205特异性的单链抗体片段(scFv)，可改善细胞和体液免疫反應保护接种动物免受肉毒杆菌感染[256]。将编码DNA疫苗的肿瘤抗原CD11c-特异性scFy融合在小鼠乳腺癌模型中具有保护作用并在治疗环境中减缓肿瘤生長[257]。

DNA疫苗在人体内的免疫原性仍较低有待临床治疗结果。然而在过去的15年里，不同的方法表明优化不同的参数有助于增强转染从而增强DNA疫苗在人体内的免疫原性。因此理想的DNA疫苗需要与APC靶向NC结合，以防止细胞外降解并使APC直接转染成为可能并将包含NLS以促进核进入。DNA疫苗应该包含促进APC转录的启动子以防止在耐受促进细胞类型（如MDSC）中出现不需要的抗原表达。此外DNA疫苗应该包括一种基因佐剂，它可鉯促进转染APC的激活以防止抗原特异性耐受诱导。值得注意的是几种NC具有固有的免疫刺激活性并且DNA传递方式也可能导致局部炎症。这两個因素都需要考虑因为它们有助于形成诱导免疫反应的特征，尤其是在T细胞极化方面[258]关于图蒙治疗，最近在成本有效的深度测序方面取得的进展可以确定患者的特异性肿瘤抗原[259]

虽然，上述DNA疫苗的使用目的是诱导抗原特异性免疫反应同时应用于抑制免疫调节髓细胞抗原如MDSC和Treg以及肿瘤本身的药物可能具有协同作用[260]。除了化疗外最近被引入临床治疗的检查点抑制剂也可能是共同治疗的候选药物[261]。

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