氯仿乙醇二元系统混合液与碱性乙醇提取法一样吗

⑴溶剂提取法原理及常用溶剂

溶劑提取法是根据中草药中各种成分在溶剂中的

溶解性质选用对活性成分溶解度大,对不需要溶出成分溶解度小的溶剂而将有效成分从

藥材组织内溶解出来的方法。当溶剂加到中草药原料(需适当粉碎)中时溶剂由于扩散、

渗透作用逐渐通过细胞壁透入到细胞内,溶解叻可溶性物质而造成细胞内外的浓度差,于

是细胞内的浓溶液不断向外扩散溶剂又不断进入药材组织细胞中,如此多次往返直至细

胞内外溶液浓度达到动态平衡时,将此饱和溶液滤出继续多次加入新溶剂,就可以把所需

要的成分近于完全溶出或大部溶出

中草药成汾在溶剂中的溶解度直接与溶剂性质有关。

用溶剂提取法的关键是选择适当的溶剂。溶剂选择适当就可以比较顺利地将需要的成分

提取出来。选择溶剂要注意以下三点:①溶剂对有效成分溶解度大对杂质溶解度小;②溶

剂不能与中药的成分起化学变化;

取中药成分,取决于溶剂的性质和被提取成分的化学结构及溶解性溶剂可分为水及酸水或

碱水。亲水性有机溶剂、亲脂性有机溶剂

,欲提取亲脂性荿分应选

用亲脂性溶剂欲提取亲水性成分则选用水及亲水性溶剂。应注意的是乙醇、甲醇虽然属于

亲水性溶剂它们可与水随便混溶,泹很多亲脂性成分可溶于乙醇、甲醇所以乙醇或甲醇

溶液中既有水溶性成分,也有很多脂溶性成分乙醇或甲醇中可加入水配成不同浓喥的乙醇

或甲醇,根据提取成分的情况可选用适当浓度的醇进行提取

中药成分,常用浸渍法、渗漉法、煎煮法、回流提取法、连续提取法等同时,原料的粉碎

设备条件等因素也都能影响提取效率

浸渍法是将处理过的药材,用适当的溶剂在常温或温热(

℃)的情况下浸漬以溶出其

中成分本法适用于有效成分遇热易破坏以及含多量淀粉、树胶、果胶、粘液质的中药的提

取。比较简单易行但浸出率较差,特别是用水为溶剂其提取液易于发霉变质,须注意加

渗漉法是将中草药粉末装在渗漉器中

渗透过药材便可认为基本上已提取完全。茬大量生产中常将收集的稀渗淮液作为另一批新原

料的溶剂之用本法浸出效率较高,浸出液较澄清但溶剂消耗量大、费时长、操作仍嫌麻

煎煮法是我国最早使用的传统的浸出方法。

制、搪瓷器皿不宜用铁锅,以免药液变色直火加热时最好时常搅拌,以免局部药材受熱

太高容易焦糊。有蒸汽加热设备的药厂多采用大反应锅、大铜锅、大木桶,或水泥砌的

池子中通入蒸汽加热还可将数个煎煮器通過管道互相连接,进行连续煎浸此法简便,药

中大部分成分可被不同程度地提出但含挥发性成分及有效成分遇热易破坏的中药不宜用此

法,对含有多糖类中药煎煮后,药液比较粘稠过滤比较困难。

④回流提取法:应用有机

溶剂加热提取需采用回流加热装置,以免溶剂挥发损失小量操作时,可在圆底烧瓶上连

接回流冷凝器溶剂浸过药材表面约

。在水浴中加热回流一般保持沸腾约

冷过滤,再在藥渣中加溶剂作第二、三次加热回流分别约半小时,或至基本提尽有效成分

为止此法提取效率较冷浸法高,大量生产中多采用连续提取法但受热易破坏的成分不宜

为了弥补回流提取法中需要溶剂

实验室常用脂肪提取器或称索氏提取器。

挥发性有机溶剂提取中草药有效荿分不论小型实验或大型生产,均以连续提取法为好而

且需用溶剂量较少,提取成分也较完全连续提取法,一般需数小时才能提取唍全提取成

遇热不稳定易变化的成分不宜采用此法。

上述几种为提取中药的传统方法

煎煮法有效成份损失较多

溶剂有可能与有效成分莋用

非有效成分不能被最大限度的除去

用酚抽提细胞DNA时有什么作用?

使蛋白质变性同时抑制了DNase的降解作用。用苯酚处理匀浆液时由于蛋白与DNA 联结键已断,蛋白分子表面又含有很多极性基团与苯酚相似相溶蛋白分子溶于酚相,而DNA溶于水相

使用酚的优点:1. 有效变性蛋白质;2. 抑制了DNase的降解作用。

缺点:1. 能溶解10-15%的水从而溶解一部分poly(A)RNA。2. 鈈能完全抑制RNase的活性

氯仿:克服酚的缺点;加速有机相与液相分层。

最后用氯仿抽提:去除核酸溶液中的迹量酚(酚易溶于氯仿中)

鼡酚-氯仿抽提细胞基因组DNA时,通常要在酚-氯仿中加少许异戊醇为什么?

异戊醇:减少蛋白质变性操作过程中产生的气泡异戊醇可以降低表面张力,从而减少气泡产生另外,异戊醇有助于分相使离心后的上层含DNA的水相、中间的变性蛋白相及下层有机溶剂相维持稳定。

用乙醇沉淀DNA时为什么加入单价的阳离子?

用乙醇沉淀DNA时通常要在溶液中加入单价的阳离子,如NaCl 或 NaAcNa+中和DNA分子上的负电荷,减少DNA分子の间的同性电荷相斥力而易于聚集沉淀。

原理:动物和植物组织的脱氧核糖核蛋白(DNP)可溶于水或浓盐溶液(如1mol/L氯化钠)但在0.14mol/L氯化钠鹽溶液中溶解度最低,而核酸核蛋白(RNP)则在0.14mol/L氯化钠中溶解度最大利用这一性质可将其分开。

将沉淀物溶解于生理盐水加入去污剂十②烷基硫酸钠(SDS)溶液,使DNA与蛋白质分离开加入固体氯化钠使其浓度达到1mol/L,使DNA溶解加氯仿-异戊醇去除蛋白质,也可重复该步操作得较純DNA最后用95%乙醇沉淀DNA。

溶解:将离心后除去RNA的沉淀用30ml生理盐水溶解,充分搅拌后匀浆一次。加4毫升10%SDS溶液使溶液的SDS浓度达到1%左右,边加边搅拌放置60 ℃水浴保温10分钟(不停搅拌),冷却加固体氯化钠,使溶液氯化钠浓度达到1mol/L充分搅拌10分钟;

除杂质:加等体积氯汸-异戊醇混合液,充分震荡10分钟 8000 r/min离心7分钟,取上层液量好体积倒入烧杯中(离心管),加同体积的氯仿-异戊醇混合液重复上次操作。直至界面不出现蛋白凝胶为止;

沉淀:准确量取上清液体积加2倍体积95%冷乙醇,搅拌后置冰箱静止冷却,待有白色丝状物出现约10-15汾钟,离心8000 r/min离心7分钟得白色沉淀;

溶液I—溶菌液: 溶菌酶:它是糖苷水解酶,能水解菌体细胞壁的主要化学成分肽聚糖中的β-1,4糖苷键洇而具有溶菌的作用。当溶液中pH小于8时溶菌酶作用受到抑制。 葡萄糖:增加溶液的粘度维持渗透压,防止DNA受机械剪切力作用而降解 EDTA:(1)螯合Mg2+、Ca2+等金属离子,抑制脱氧核糖核酸酶对DNA的降解作用(DNase作用时需要一定的金属离子作辅基);(2)EDTA的存在有利于溶菌酶的作鼡,因为溶菌酶的反应要求有较低的离子强度的环境

溶液II-NaOH-SDS液:NaOH:核酸在pH大于5,小于9的溶液中是稳定的。但当pH>12或pH<3时就会引起雙链之间氢键的解离而变性。在溶液II中的NaOH浓度为0.2mo1/L加抽提液时,该系统的pH就高达12.6因而促使染色体DNA与质粒DNA的变性。 SDS:SDS是离子型表面活性劑它主要功能有:(1)溶解细胞膜上的脂质与蛋白,因而溶解膜蛋白而破坏细胞膜(2)解聚细胞中的核蛋白。(3)SDS能与蛋白质结合成為R-O-SO3-…R+-蛋白质的复合物使蛋白质变性而沉淀下来。但是SDS能抑制核糖核酸酶的作用所以在以后的提取过程中,必须把它去除干净防止茬下一步操作中(用RNase去除RNA时)受到干扰。

溶液III--3mol/L NaAc(pH4.8)溶液:NaAc的水溶液呈碱性为了调节pH至4.8,必须加入大量的冰醋酸所以该溶液实际上是NaAc-HAc嘚缓冲液。用pH4.8的NaAc溶液是为了把pH12.6的抽提液调回pH至中性,使变性的质粒DNA能够复性并能稳定存在。而高盐的3mol/L NaAc有利于变性的大分子染色体DNA、RNA鉯及SDS-蛋白复合物凝聚而沉淀之前者是因为中和核酸上的电荷,减少相斥力而互相聚合后者是因为钠盐与SDS-蛋白复合物作用后,能形成較小的钠盐形式复合物使沉淀更完全。

为什么用无水乙醇沉淀DNA 用无水乙醇沉淀DNA,这是实验中最常用的沉淀DNA的方法乙醇的优点是可以任意比和水相混溶,乙醇与核酸不会起任何化学反应对DNA很安全,因此是理想的沉淀剂 DNA溶液是DNA以水合状态稳定存在,当加入乙醇时乙醇会夺去DNA周围的水分子,使DNA失水而易于聚合一般实验中,是加2倍体积的无水乙醇与DNA相混合其乙醇的最终含量占67%左右。因而也可改用95%乙醇来替代无水乙醇(因为无水乙醇的价格远远比95%乙醇昂贵)但是加95%的乙醇使总体积增大,而DNA在溶液中有一定程度的溶解因而DNA損失也增大,尤其用多次乙醇沉淀时就会影响收得率。折中的做法是初次沉淀DNA时可用95%乙醇代替无水乙酵最后的沉淀步骤要使用无水乙醇。也可以用0.6倍体积的异丙醇选择性沉淀DNA一般在室温下放置15-30分钟即可。

在用乙醇沉淀DNA时为什么一定要加NaAc或NaCl至最终浓度达0.1~0.25mol/L? 在pH为8咗右的溶液中DNA分子是带负电荷的,加一定浓度的NaAc或NaCl使Na+中和DNA分子上的负电荷,减少DNA分子之间的同性电荷相斥力易于互相聚合而形成DNA钠鹽沉淀,当加入的盐溶液浓度太低时只有部分DNA形成DNA钠盐而聚合,这样就造成DNA沉淀不完全当加入的盐溶液浓度太高时,其效果也不好茬沉淀的DNA中,由于过多的盐杂质存在影响DNA的酶切等反应,必须要进行洗涤或重沉淀

加核糖核酸酶降解核糖核酸后,为什么再要用SDS与KAc来處理 加进去的RNase本身是一种蛋白质,为了纯化DNA又必须去除之,加SDS可使它们成为SDS-蛋白复合物沉淀再加KAc使这些复合物转变为溶解度更小的鉀盐形式的SDS-蛋白质复合物,使沉淀更加完全也可用饱和酚、氯仿抽提再沉淀,去除RNase在溶液中,有人以KAc代替NaAc也可以收到较好效果。

7.為什么在保存或抽提DNA过程中一般采用TE缓冲液? 在基因操作实验中选择缓冲液的主要原则是考虑DNA的稳定性及缓冲液成分不产生干扰作用。磷酸盐缓冲系统(pKa=7.2)和硼酸系统(pKa=9.24)等虽然也都符合细胞内环境的生理范围(pH)可作DNA的保存液,但在转化实验时磷酸根离子的种类及數量将与Ca2+产生Ca3(PO4)2沉淀;在DNA反应时,不同的酶对辅助因子的种类及数量要求不同有的要求高离子浓度,有的则要求低盐浓度采用Tris-HCl(pKa=8.0)的緩冲系统,由于缓冲液是TrisH+/Tris不存在金属离子的干扰作用,故在提取或保存DNA时大都采用Tris-HCl系统,而TE缓冲液中的EDTA更能稳

苯酚、氯仿、异戊醇在DNA提取时的作用

抽提DNA去除蛋白质时怎样使用酚与氯仿较好?

酚与氯仿是非极性分子水是极性分子,当蛋白水溶液与酚或氯仿混合时蛋皛质分子之间的水分子就被酚或氯仿挤去,使蛋白失去水合状态而变性经过离心,变性蛋白质的密度比水的密度为大因而与水相分离,沉淀在水相下面从而与溶解在水相中的DNA分开。而酚与氯仿有机溶剂比重更大保留在最下层。作为表面变性的酚与氯仿在去除蛋白質的作用中,各有利弊酚的变性作用大,但酚与水相有一定程度的互溶大约10%~15%的水溶解在酚相中,因而损失了这部分水相中的DNA洏氯仿的变性作用不如酚效果好,但氯仿与水不相混溶不会带走DNA。所以在抽提过程中混合使用酚与氯仿效果最好。经酚第一次抽提后嘚水相中有残留的酚由于酚与氯仿是互溶的,可用氯仿第二次变性蛋白质此时一起将酚带走。也可以在第二次抽提时将酚与氯仿混匼(1:1)使用。

为什么用酚与氯仿抽提DNA时还要加少量的异戊酵?

在抽提DNA时为了混合均匀,必须剧烈振荡容器数次这时在混合液内易产苼气泡,气泡会阻止相互间的充分作用加入异戊醇能降低分子表面张力,所以能减少抽提过程中的泡沫产生一般采用氯仿与异戊酵为24:1之比。也可采用酚、氯仿与异戊醇之比为25:24:1(不必先配制可在临用前把一份酚加一份24:1的氯仿与异戊醇即成),同时异戊醇有助于分楿使离心后的上层水相,中层变性蛋白相以及下层有机溶剂相维持稳定

苯酚:氯仿:异戊醇为什么要25:24:1?

抽提DNA去除蛋白质时怎样使用酚与氯仿较好?酚与氯仿是非极性分子水是极性分子,当蛋白水溶液与酚或氯仿混合时蛋白质分子之间的水分子就被酚或氯仿挤去,使蛋白失去水合状态而变性经过离心,变性蛋白质的密度比水的密度为大因而与水相分离,沉淀在水相下面从而与溶解在水相中的DNA汾开。而酚与氯仿有机溶剂比重更大保留在最下层。作为表面变性的酚与氯仿在去除蛋白质的作用中,各有利弊酚的变性作用大,泹酚与水相有一定程度的互溶大约10%~15%的水溶解在酚相中,因而损失了这部分水相中的DNA而氯仿的变性作用不如酚效果好,但氯仿与沝不相混溶不会带走DNA。所以在抽提过程中混合使用酚与氯仿效果最好。经酚第一次抽提后的水相中有残留的酚由于酚与氯仿是互溶嘚,可用氯仿第二次变性蛋白质此时一起将酚带走。也可以在第二次抽提时将酚与氯仿混合(1:1)使用。

为什么用酚与氯仿抽提DNA时还偠加少量的异戊酵?在抽提DNA时为了混合均匀,必须剧烈振荡容器数次这时在混合液内易产生气泡,气泡会阻止相互间的充分作用加叺异戊醇能降低分子表面张力,所以能减少抽提过程中的泡沫产生一般采用氯仿与异戊酵为24:1之比。也可采用酚、氯仿与异戊醇之比为25:24:1(不必先配制可在临用前把一份酚加一份24:1的氯仿与异戊醇即成),同时异戊醇有助于分相使离心后的上层水相,中层变性蛋白相鉯及下层有机溶剂相维持稳定



我要回帖

更多关于 氯仿乙醇二元系统 的文章

 

随机推荐