新手求助western转膜液时间问题

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各类western转膜条件
各类western转膜条件
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除了抗体原因,转膜恐怕是western blot成败的最关键因素。
园子里好多好多人在求助转膜时间,因此我们总结了一系列分子量蛋白转膜的时间,希望对大家有用。
蛋白来源:RAW264.7 总蛋白
蛋白名称(可保密):一些转录因子
蛋白分子量:40~70 KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒流400 mA
转膜时间:60~90 min
PS.其实吧,以我的经验来看,除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要,曾经因为失误,转了15 min就拆下来了,但从丽春红染色来看,跟平常实验也没有太大的区别。
蛋白来源:内皮细胞 总蛋白
蛋白名称(可保密):occludin & AKT
蛋白分子量:65 KD & 56 KD
WB用膜类型、孔径:0.45 PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 100 V
转膜时间:60~70 min
设备名字是“Bio-Rad mini”。
蛋白来源:乳鼠心肌细胞和成年鼠心肌组织 总蛋白和核蛋白
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:65 KD & 55 KD
WB用膜类型、孔径:PVDF(预先用甲醇处理)
转膜方式(恒压、恒流):半干转 恒压 12 V
转膜时间:30-40 min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:最开始做过湿转(过夜的那种),太费事费时,效果也不如半干转。
蛋白来源:293T细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:95 KD & 35 KD
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 90 V-110 V,控制电流不要超过300 mA。
转膜时间:70 min
蛋白来源:肿瘤手术标本
蛋白名称(可保密):转录因子
蛋白分子量:33 KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350 mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
说明:相同条件曾用于数个30-70 KDa的蛋白,都能成功转上,不过没有试缩短时间效果如何;实验时没为转膜条件苦恼,倒是电泳时胶的浓度及时间根据不同分子量而有区别。
蛋白来源:成纤维细胞
蛋白名称(可保密):smad3
蛋白分子量:54 KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350 mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
蛋白来源:胰腺癌细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:16 KDa and 42 KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):120 V 恒压
转膜时间:90 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
蛋白来源:大鼠血管平滑肌细胞
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:72 KD,42 KD 和22 KD
WB用膜类型、孔径:一般的PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流一张膜0.26 A,两张膜0.3 A。
转膜时间:90 min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜缓冲液最多用3次,最好现用现配,我们用的没有加SDS,转的时候最好能用冰块一类的东西降一下温,这样转的效果要好一些,转的时候一定要把三明治每层之间的气泡除去,同时使滤纸大于膜,膜大于胶,以免烧坏电极。
蛋白来源:大鼠PBMC
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:55 KD
WB用膜类型、孔径:0.22的PVDF膜
转膜方式(恒流):湿转
转膜时间:60-90 min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜液用过两三次之后转膜效果就很差了 其它按照常规就好了 其实0.22的膜一般不怕转过头 以我们的经验,转膜时间、电压其实也有很大范围的调整 ,并不是非要固定于哪一个最合适,曾经做过 一张膜转,17 KD的和170 KD的,按照170 KD的条件,17 KD的转膜也很好的。
蛋白来源:人非小细胞肺癌细胞系
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:大于250 kD
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45 um
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流0.3A。
转膜时间:180min
设备:“Bio-Rad ”
建议:电转保持电压在70 V以上,保持低温,如果电压低过70就需要换缓冲液了。
蛋白来源:白血病细胞
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:28 KD
WB用膜类型、孔径:0.45的NC膜
转膜方式(恒流):湿转,90 min,0.25 A
设备:“Bio-Rad ”
建议:海绵厚度要合适,一次转磨用的海绵太薄,导致三明治没夹紧,转膜后拿出来一看,marker都变得七扭八歪。但是有前辈说垫的海绵太厚可能将胶压断,没经历过,不知道是不是会有这种情况。
蛋白来源:肿瘤细胞
蛋白名称(可保密):磷酸化蛋白
蛋白分子量:10-200 KDa
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45 um
转膜方式(恒压、恒流):120 v 恒压
转膜时间:120 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
建议:转膜缓冲液只用2次,基本都转上,5%BSA封闭,减少背景。
蛋白来源:胰腺β细胞
蛋白名称(可保密):******
蛋白分子量:90-130 KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):250 mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备:湿转
蛋白来源:原核表达
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:38 KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压:100 V
转膜时间:120 min
蛋白来源:心脏
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:220 kDa,130 kDa,70 kDa,41kDa
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:70 v120 min,180 min,5-6 h
转膜设备:伯乐湿转
建议改进方向(可选):40 kDa一下,70 v ,60-90 min足够,40-70 kDa 90-120 min即可。
70-120 kDa ,70 v,120-180 min足够,120-180 kDa ,180-240 min,180 kDa以上建议6 h。
蛋白来源:卵巢癌细胞膜蛋白
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:53 KD
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45 um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:80 V 100 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
蛋白来源:人宫颈癌HELA细胞总蛋白
蛋白名称(可保密):β-actin
蛋白分子量:42
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45 um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:50 4 h
转膜设备:湿转 Bio-Rad
蛋白来源:脑组织
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:16 KD、27 KD、32 KD、42 KD
WB用膜类型、孔径:PVDF 0.22 um
转膜方式(恒压、恒流):半干转 恒流 1 mA/cm2或2 mA/cm2
转膜时间:不定
转膜设备:北京六一仪器
建议:我共做了六个蛋白,所以总在想节约时间的方式。
在预试时我会观察电压数与转膜效率的关系,所以我不会按时间来定何时转完,而是按电压来定。通过染胶来确定电压数与转移蛋白分子量上限的关系。这样有的5分钟就转完了,不用多浪费时间。并且六一的半干转膜仪随着使用次数的增多,效率也会下降,所以时间和转膜效率(尤其是使用后期)的关系并不稳定,单纯依靠时间有时会有问题。
蛋白来源:CHO cell
蛋白名称(可保密):酶原
蛋白分子量:40 KD
WB用膜类型、孔径:0.22的PVDF膜(Biorad)
转膜方式(恒压):100 V,湿转,转膜时间:60 min。
设备:Tanon(上海天能)
转膜液现用现配,用完倒掉。
转膜时间,电压可以适当调整。分子量大或者小一些的蛋白,采用此条件一样转膜效率很高。
蛋白来源:Hepg2
蛋白名称(可保密):EGFR
蛋白分子量:170kd
WB用膜类型、孔径:pvdf 0.45
转膜方式(恒压、恒流):24V
转膜时间:2个半小时
转膜设备:伯乐半干转
蛋白来源:肝癌细胞
蛋白名称:HIF-1α
蛋白分子量:120 kD
WB用膜类型、孔径:NC膜
转膜方式(恒压):80伏,湿转
转膜时间:150分钟
设备:“Bio-Rad mini”
建议:湿转,转膜液特别重要,否则会导致电压或者电流不稳影响转膜条带。转膜均现配先用,不重复利用。转膜时间一般是150分钟,80伏恒压。经李春红染色,靠近蛋白胶的一侧膜上蛋白染色深,膜另外一面染色浅,说明蛋白未转过。该湿转条件自己做过的蛋白分子量范围:170-36 kD。
蛋白来源:心肌细胞总和膜
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:128 KD,100,60,55,43 KD
WB用膜类型、孔径:NC膜 0.2 um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:70 V 200 min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
建议:转膜液最好现配现现用,或配成母液,最好不重复使用,70 V电压下,电流约154 mA。甲醇可以加到150 ml。对大分子量如200 KD转膜时间延长6-8 h。
相关实验方法
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【求助】western转膜后marker明显变粗,为什么,内参蛋白也变粗,求助!!
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这个帖子发布于2年零39天前,其中的信息可能已发生改变或有所发展。
问题已解决悬赏丁当:2
我和我同学第一次做western, 每人做一块胶,我们两个的条件一样,我们两个跑电泳时marker跑得非常漂亮,但是转膜时,我的膜上marker变粗,但同学的marker还是很漂亮,tubulin一抗4°过夜,1:7500, 封闭2小时,二抗1:10000,结果显示我的内参蛋白和marker一样,很粗。。。。。。。。
两者对比,我认为是转膜出了问题,因为其他流程我们一样,转膜是我我确实很认真地排气泡,请各位前辈帮忙找原因,谢谢下面的是我做的,marker条带明显变粗上面是我做的,marker和内参蛋白增粗,求解答
不知道邀请谁?试试他们
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三明治没压好,要贴严实
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如二楼所言,没压紧,扩散开了
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李娟01 三明治没压好,要贴严实好的,谢谢前辈,可是我感觉架子还是挺紧的,我明天再做一下试试,谢谢!
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NOYET 如二楼所言,没压紧,扩散开了好的,谢谢前辈,我明天再试试,可不可以多夹块海绵,这样会紧些?
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大点2 好的,谢谢前辈,我明天再试试,可不可以多夹块海绵,这样会紧些?一块不行两块,不夹碎了就行
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NOYET @大点2:好的,谢谢前辈,我明天再试试,可不可以多夹块海绵,这样会紧些??一块不行两块,不夹碎了就行那请问前辈还有别的好办法能紧些吗,非常感谢您的帮助!
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模具本身的质量问题,再就是操作问题了,一般做多了就有经验了,不行换个卡子
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NOYET 模具本身的质量问题,再就是操作问题了,一般做多了就有经验了,不行换个卡子谢谢前辈,明天再做,告诉您结果??
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谢谢前辈的指教,上面的那个结果还行,就是有点内参不齐
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关于丁香园& 【求助】western 转膜-预染marker转移不全
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【求助】western 转膜-预染marker转移不全
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【求助】western 转膜-预染marker转移不全
请教:做western 时用的Formatas的预染marker,Millipore PVDF 膜,转膜后可见75KD以上的大分子量的marker,但是看不到小分子量的marker,转膜条件:湿转,恒流自80-300mA,1-4小时都试过了.在胶上还可见少量大分子量的marker时,不论是凝胶还是膜上均不见75KD以下的小分子量的marker。延长转膜时间大分子量的marker均转至膜上,仍不见小分子量的marker。
转移缓冲液配方:Tris 5.8g,甘氨酸2.9g,SDS0.37g,甲醇200ml,加水至1L。
先谢谢大家!
信誉分 100
可用分 5078
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转印缓冲液中的SDS去掉试试
SDS可能影响小分子蛋白转膜
信誉分 100
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多谢!明天我再试一下。今天用NC膜和PVDF膜同时做,条件相同,NC膜maker全部转移至膜上,PVDF膜仍然部分转移,且与NC膜比较,marker 颜色较浅。不知是何原因。
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你的pvdf膜孔径是0.45的还是0.2的?
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不知道你是怎么理解转膜的?
在SDS-PADE凝胶中,蛋白运动的速度由分子量和电场强度决定。分子量越大运动越慢,反之越快。电场强度越大,速度越快,反之越慢。
你也发现凝胶和膜上都没有小分子量预染marker,那就说明小分子量的蛋白已经从凝胶中出来,但又没在膜上——肯定是转过了,都跑到转移缓冲液里面去了!那么就应该减少转移时间,怎么会想起要去延长呢?岂不是转过的更多吗?
你做的目的蛋白是多大分子量的啊?如果在20KD以下,强烈建议用0.22(0.2um?)um孔径的膜。如果是30kD以上,可以用0.45um孔径的。可同时用两张膜重叠在一起,即便有蛋白穿过第一张膜,也会被第二张拦住的。
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原帖由 ritou1985 于
15:41 发表
不知道你是怎么理解转膜的?
在SDS-PADE凝胶中,蛋白运动的速度由分子量和电场强度决定。分子量越大运动越慢,反之越快。电场强度越大,速度越快,反之越慢。
你也发现凝胶和膜上都没有小分子量预染marker,那就说明小分子量的蛋 ... 谢谢!我同意您的看法,因为我的目的蛋白有两个25KD和110KD,内参42KD,当时延长时间是为了看110KD的转膜时间;但无论如何Marker也应该有的吧,而且做了对照,NC膜效果很好。若“同时用两张膜重叠在一起,即便有蛋白穿过第一张膜,也会被第二张拦住的”,若两张膜上都有,以下的步骤如何进行?两张膜都曝光?这样可以么?
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我们原先一块儿做过实验:
所谓的marker并不是什么特别的东西,只是已知分子量的几种蛋白的混合物,有些在上面已经用染料做了标记,有的没有。也就是说它具有蛋白共同具有的性质,自然也可以转过了;
你的两个目的蛋白分子量相差过大,建议电泳后将凝胶在110KD和42KD之间小心切成两块,两块胶分别同时转印,小分子量的转印时间短些,大分子量的时间长些。这种方法简便易行,也是允许使用的。
可以把两张膜都孵育一下。也可以根据两张膜上的marker颜色深浅来决定选择哪一张:在你的目的蛋白附近的marker颜色更深的,也就是更可能出现阳性结果的膜。
祝你实验顺利!~~
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今天用PVDF膜0.45试了下,转移液中去掉SDS,110mA 1h,结果膜上可见Marker的所有条带,同时滤纸上也有模糊的条带,估计是转的时间长了或是电流大了,遂决定明天用NC膜和PVDF膜减小电流或缩短时间再试一下不知是否可行。【分享帖】秀出你的western转膜条件 - 经验共享 - 分析测试百科网 - 分析测试百科网
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【分享帖】秀出你的western转膜条件
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除了抗体原因,转膜是怕是western成败的最关键因素。
看到园子里好多好多人在求助转膜时间,园子为何总结出一系列分子量蛋白转膜的时间呢?少说这对于大多数新手来说,是极好的礼物,说大点,借助丁香园的强势人气,此举可以提高我国一线科研人员WB水平也未必。我认为不用摸转摸条件的话,WB的效率提高数倍不成问题。
请大家多多提供一线转膜经验
也请园子里管事的兄弟姐妹多思量,我希望可以发起一个全园子的征集计划,由本板块版主负责筛选归纳。
[ 本帖最后由 woshiduiyan 于
17:39 编辑 ]查看完整版本请点击这里:
zwsyrt ( 16:52:02)
蛋白来源: 肌肉细胞膜
蛋白名称(可保密): ***
蛋白分子量: 50--80 kDa
WB用膜类型、孔径: NC膜/PVDF膜(本次试验的结果选用的是NC膜)
转膜方式(恒压、恒流): 半干转 恒流50mA
转膜时间: 70 min
图片(可选):
建议改进方向(可选):
9900 ( 16:52:32)
蛋白来源:RAW264.7 总蛋白
蛋白名称(可保密):一些转录因子
蛋白分子量:40~70KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒流400mA
转膜时间:60~90min
PS.其实吧,以我的经验来看,除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要
曾经因为失误,转了15min就拆下来了,但从丽春红染色来看,跟平常实验也没有太大的区别
one ( 16:52:54)
蛋白来源:内皮细胞 总蛋白
蛋白名称(可保密):occludin & AKT
蛋白分子量:65KD & 56KD
WB用膜类型、孔径:0.45 PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 100V
转膜时间:60~70min
同意“ycwzq”所说的“除非目的蛋白特别小,或者特别大,不然转膜时间真的不是那么重要”。
鉴于“wcm123_1980”版主所提的意见,我把目的蛋白名字也秀出来了,设备名字是“Bio-Rad mini”。
2541 ( 16:53:30)
蛋白来源:乳鼠心肌细胞和成年鼠心肌组织 总蛋白和核蛋白
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:65KD & 55KD
WB用膜类型、孔径:PVDF(预先用甲醇处理)
转膜方式(恒压、恒流):半干转 恒压 12V
转膜时间:30-40min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:最开始做过湿转(过夜的那种),太费事费时,效果也不如半干转;
9900 ( 16:54:06)
蛋白来源:293T细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:95KD & 35KD
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压 90V-110V,控制电流不要超过300mA。
转膜时间:70min
eric930 ( 16:55:00)
相关疾病:
蛋白来源:肿瘤手术标本
蛋白名称(可保密):转录因子
蛋白分子量:33KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
说明:相同条件曾用于数个30-70KDa的蛋白,都能成功转上,不过没有试缩短时间效果如何;
实验时没为转膜条件苦恼,倒是电泳时胶的浓度及时间根据不同分子量而有区别。
eric930 ( 16:55:30)
蛋白来源:成纤维细胞
蛋白名称(可保密):smad3
蛋白分子量:54KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):350mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
IAM007 ( 16:55:58)
蛋白来源:胰腺癌细胞
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:16KDa and 42KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):120V 恒压
转膜时间:90 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
98776langtao ( 16:56:20)
蛋白来源:大鼠血管平滑肌细胞
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:72KD,42KD 和22KD
WB用膜类型、孔径:一般的PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流一张膜0.26A,两张膜0.3A. 转膜时间: 90min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜缓冲液最多用3次,最好现用现配,我们用的没有加SDS,转的时候最好能用冰块一类的东西降一下温,这样转的效果要好一些,转的时候一定要把三明治每层之间的气泡除去,同时使滤纸大于膜,膜大于胶,以免烧坏电极。
windy+++ ( 16:56:41)
蛋白来源:大鼠PBMC
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:55KD
WB用膜类型、孔径:0.22的PVDF膜
转膜方式(恒流):湿转,转膜时间: 60-90min
设备:“Bio-Rad mini”
建议:转膜液用过两三次之后转膜效果就很差了 其它按照常规就好了
其实0.22的膜一般不怕转过头 以我们的经验,转膜时间、电压其实
也有很大范围的调整 ,并不是非要固定于哪一个最合适,曾经做过
一张膜转,17KD的和170KD的,按照170KD的条件,17KD的转膜也很好的
(没有过头)
49888 ( 16:57:02)
蛋白来源:人非小细胞肺癌细胞系
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:大于250kD
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):湿转,恒流0.3A. 转膜时间: 180min
设备:“Bio-Rad ”
建议:电转保持电压在70V以上,保持低温,如果电压低过70就需要换缓冲液了。
附一张图,是用数码相机微距拍的。
04906 ( 16:57:40)
蛋白来源:白血病细胞
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:28KD
WB用膜类型、孔径:0.45的NC膜
转膜方式(恒流):湿转,90min,0.25A
设备:“Bio-Rad ”
建议:海绵厚度要合适,一次转磨用的海绵太薄,导致三明治没夹紧,转膜后拿出来一看,marker都变得七扭八歪。但是有前辈说垫的海绵太厚可能将胶压断,没经历过,不知道是不是会有这种情况
tianmei001 ( 16:58:03)
蛋白来源:肿瘤细胞
蛋白名称(可保密):磷酸化蛋白
蛋白分子量:10-200KDa
WB用膜类型、孔径:millipore PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):120v 恒压
转膜时间:120 min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
建议:转膜缓冲液只用2次,基本都转上,5%BSA封闭,减少背景
viviwang1987 ( 16:58:34)
蛋白来源:胰腺β细胞
蛋白名称(可保密):******
蛋白分子量:90-130KDa
WB用膜类型、孔径:PVDF膜
转膜方式(恒压、恒流):250mA 恒流
转膜时间:150 min
转膜设备: 湿转
bamboo16 ( 16:59:01)
蛋白来源:原核表达
蛋白名称(可保密):保密
蛋白分子量:38KD
WB用膜类型、孔径:0.45 NC
转膜方式(恒压、恒流):湿转 恒压:100V
转膜时间:120min
pengke1983 ( 16:59:26)
蛋白来源:心脏
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:220kDa,130kDa,70kDa,41kDa
WB用膜类型、孔径:PVDF
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:70v120min,180min,5-6h
转膜设备:伯乐湿转
图片(可选):
建议改进方向(可选):40kDa一下,70v 60-90min足够,40-70kDa 90-120min即可。
70-120kDa 70v120-180min足够,120-180kDa 180-240min,180kDa以上建议6h
u234 ( 16:59:58)
蛋白来源:卵巢癌细胞膜蛋白
蛋白名称(可保密):
蛋白分子量:53KD
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:80V 100min
转膜设备: 湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
蛋白来源 卵巢癌膜蛋白
蛋白名称(可保密):磷酸化VEGFR
蛋白分子量:230
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:80V 120min
转膜设备:湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
abc816 ( 17:00:33)
蛋白来源:人宫颈癌HELA细胞总蛋白
蛋白名称(可保密):β-actin
蛋白分子量:42
WB用膜类型、孔径:PVDF膜 0.45um
转膜方式(恒压、恒流):恒压
转膜时间:50 4h
转膜设备:湿转 Bio-Rad
图片(可选):
建议改进方向(可选):
PCR ( 17:00:57)
我看各位转膜都用了好长的时间,invitrogen的iBlot把转膜时间大大的缩短了(7到10分钟),就是有点贵啊。本实验室也在研制快速转膜的仪器,现在40-100KD的蛋白7到10分钟也可以转过去,不过现在实验条件还在优化,明年初应该就可以上市了,希望可以帮助各位缩短实验的时间!
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