qiagen质粒大提小抽,抽提失败,怎么回事

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质粒抽提详细步骤
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抽提的质粒DNA电泳时怎么出现切口.断裂或降解现象?
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(1)使用的是收集后冷冻保藏的细菌.解决方法:使用新鲜培养的细菌.(2)宿主菌富含核酸内切酶.解决方法:增加一步Rinse A洗涤步骤以彻底去除残留的核酸内切酶.或者将质粒DNA进行乙醇沉淀.(3)质粒DNA在Solution II中暴露过久,易造成质粒DNA的切口断裂.裂解步骤控制在5分钟内完成.(4)培养的细菌被杂菌污染.解决方法:重新挑取单菌落培养细菌.生物帮上面有相关问题的介绍,/list-38.html Real-Time PCR技术文档,Real-Time PCR技术文档下载
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扫描下载二维码质粒提取中出现的怪问题(问题已解决)(质粒提取,摇菌,抗生素,质粒) - DNA技术 - 生物秀
标题: 质粒提取中出现的怪问题(问题已解决)(质粒提取,摇菌,抗生素,质粒)
摘要: [质粒提取中出现的怪问题(问题已解决)(质粒提取,摇菌,抗生素,质粒)] 俺做实验快两个月了,郁闷之极!到现在我已经提了一个多月的质粒了,还是在提质粒。碰到的问题很怪:用原始质粒转化细菌后接种至含选择抗生素(antibiotic)的琼脂培养板进行培养,然后挑取单个菌落接种至含选择抗生素(antibiotic)的LB培养基进行摇菌,然后取约3ml进行质粒抽提,可以提出高浓度的质粒。但是问题出在:当取部分菌液进行过夜摇菌时却提不出质粒或者质粒浓度很低。开始以为是抗生素(an 关键词:[摇菌 抗生素 质粒提取 质粒 温度 摇床 培养基]……
俺做实验快两个月了,郁闷之极!到现在我已经提了一个多月的质粒了,还是在提质粒。碰到的问题很怪:用原始质粒转化细菌后接种至含选择抗生素(antibiotic)的琼脂培养板进行培养,然后挑取单个菌落接种至含选择抗生素(antibiotic)的LB培养基进行摇菌,然后取约3ml进行质粒抽提,可以提出高浓度的质粒。但是问题出在:当取部分菌液进行过夜摇菌时却提不出质粒或者质粒浓度很低。开始以为是抗生素(antibiotic)失效,换了新的抗生素(antibiotic)还是一样;又以为是培养基的成分有问题,换了另一实验室的试剂,结果还是一样;又考虑是细菌摇床的问题,换了另一实验室的摇床,结果还是一样,简直是见鬼了。后面又换了几种试剂盒进行提取,结果也没有明显的改观。后面发现摇床的控温不准确(实际温度比显示温度高),用温度计调节好温度再摇菌,结果还是一样,简直快把人逼疯了!现在考虑摇菌时间是否偏长了一点(约14至15小时),拟于下周一再次摇菌,时间控制在10到12小时左右,再摇不出我真的要疯了。请教有无碰到类似情况的朋友,敬请指教!是否还有其他情况,恳请各位朋友不吝赐教!不胜感激!谢谢!
回复建议你用质粒转另外一种大肠杆菌(Escherichia coli),再提试试。注意转化的步骤,抗生素(antibiotic)琼脂平板是否新制备。回复你始终没有说你提质粒的方法。根据我的经验,只要是菌液达到一定浓度,质粒的量是完全可以保证的。怀疑你提的有问题,问题不是出在摇菌上。回复我也遇到了同样的问题我将质粒转化到金葡里面(金葡要加lysostaphin才能裂解),小抽量很少,于是改为大抽,每次大抽得到的质粒量也很少,完全和E. coli情形不同,而这种质粒是高拷贝的,不知道为什么,都好几个月了 ,好郁闷呀恳请大家有经验的帮帮我,指点迷经回复我觉得有两方面你可以注意下:1 片断产物有毒,细菌都死掉了。 这是我以前遇到过的情况,过夜摇菌后,第二天可见,细菌聚集成颗粒状,提得质粒浓度很低,后来发现是细菌都死掉了,质粒降解了,所以量很低,可能目的基因所表达的蛋白对细菌有毒,后来我换了一下菌株,使用Xl-blue,提质粒就好了。2 有无杂菌污染,Amp培养基摇菌时,由于细菌会把Amp抗生素(antibiotic)降解掉,造成抗生浓度降低,后果就是无抗性细菌疯狂生长,原因就是在抗性菌和非抗性菌都能生长的条件下,非抗性菌具有生长优势,另外菌体里含质粒拷贝数低的细菌较高的细菌具有生长优势。所以大提质粒时,要从新鲜平板上挑取单克隆细菌去摇菌,避免杂菌干扰质粒抽提,过夜培养的时间不要过长。建议你:1 从新鲜平板上挑取菌落来摇菌,按标准步骤来做:新鲜平板上挑取单克隆,震摇培养8小时,然后1/500-1/1000稀释,过夜摇菌12-16小时。2 换菌株,如Xl-blue等。3 如果以前没有大提过质粒的话,还是仔细看下说明书。回复先谢谢楼上各位了!首先,试剂盒应该是没问题的。因为挑取菌落摇菌后同样的试剂盒可以提出来。取少量菌液再摇就提不出或质粒浓度很低了。还是说一下用过的试剂盒:QIANGEN Plasmid
Maxi Kits (大量提取)TIANGEN质粒小提试剂盒(小量提取,换过新试剂盒)Promega公司的小提试剂盒(小量提取)我个人觉得问题出在是摇菌上或细菌菌株上。再摇不出俺也准备换菌株试试了。问题怪就怪在挑取菌落摇菌可以提出高浓度的质粒。现在我强烈怀疑摇菌时间过长营养不够细菌都死掉了,或者像sunyongjun 朋友所说的,片断产物有毒,细菌都死掉了。下一步准备接种少量菌液短时间(10-12小时)摇菌提提看,再摇不出我真的要疯了(老板逼得紧啊!)。求各位朋友再帮忙想想还有没有其他可能的问题!!!先谢谢了!!!回复这个问题我以前也遇过,经实验证明是菌株弱化了。解决方法:你将提取的质粒重新转化一次。然后挑取单克隆进行提取质粒,你就能够恢复提取的能力了。回复谢谢marklin朋友!不知转化是否用原菌株还是换菌株好些?marklin朋友觉得呢?!昨天摇了两个质粒,菌液50ul加LB培养基5ml摇菌10小时,离心三次收集细菌进行质粒小量提取。结果:一个提出了高浓度;另一个还是老样子,5ul跑胶几乎看不到。打算今天再摇一次,还不行可能真的要换菌株了。各位朋友再帮忙想想,看看可不可以不用换菌株。谢谢!回复很有可能是大摇时,许多菌死掉了,我建议你摇菌时间稍短一些,然后将菌液放置于4度过夜,再提,或许会好些,好运!我就是这么做的,呵呵回复很有可能是大摇时,许多菌死掉了,我建议你摇菌时间稍短一些,然后将菌液放置于4度过夜,再提,或许会好些,好运!我就是这么做的,呵呵昨天重新摇了一次,7ml培养基加了60ul菌液,摇菌10小时后收菌,进行质粒提取,和以前的结果差不多。还是一个摇出来了,一个很浅(但还是看得到)。月亮欣朋友觉得摇菌时间10小时还需要进一步缩短吗?另外4度过夜的目的是什么?是想提高质粒的丰度吗?会不会由此增加细菌死掉的数量?我曾经试过在摇菌8小时的时候加入氯霉素(终浓度170ug/ml)以提高质粒的丰度,结果和未加氯霉素的比较菌量和提取质粒的量差别都不明显。回复还是菌的问题,换个菌株就ok了,试试吧:)回复不好意思,我是新手,我想问一下,既然挑取单个菌落了,为什么还要取部分菌液?谢谢了回复不好意思,我是新手,我想问一下,既然挑取单个菌落了,为什么还要取部分菌液?谢谢了挑取单个菌落加入5-10ml 培养基中摇菌8小时,然后再以此菌液为原液,取部分摇菌进行质粒提取。回复谢谢医坛小媛,我还没有开始做实验,对步骤还没有完全了解--谢谢回复大提了一次,浓度低。下一步打算换菌株了。重新挑菌落摇菌,可以提出质粒,浓度高。再摇一次所提质粒浓度就明显低了好多,再问问看有没有朋友碰到这种情况。回复你摇菌时用的是大试管和锥形瓶吗?有没有留点缝隙?回复做感受态之前测过OD600没有啊?回复你摇菌时用的是大试管和锥形瓶吗?有没有留点缝隙?小提时摇菌是用的50ml离心管,大提用的是1000ml三角烧瓶(就是锥形瓶)。每次都留了缝隙的。感受态不是俺自己做的,不知测OD600没有?!请问如果没测会出现这种情况吗?回复忘了给大家个回信了。我换了JM109菌株,用已经提出的质粒(因为原质粒浓度太低,所以没用原质粒)做转化,一代和二代都已经提出质粒了,浓度不错。再次谢谢大家的帮忙!
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